产品介绍

蛋白质免疫印迹(Western Blot)是将蛋白质转移到膜上,然后利用抗体进行检测。对已知表达蛋白,可用相应抗体作为一抗进行检测,对新基因的表达产物,可通过融合部分的抗体检测。


应用领域

1、基础分子生物学与生物化学研究 2、疾病机制与诊断研究 3、药物研发与疗效评价 4、基因工程与生物制药质控 5、农业与植物科学研究 6、中医药研究领域


技术原理




分析内容

一、通用基础分析内容(两种方法均需完成)
条带特异性验证   对比预染蛋白 Marker的条带位置,判断目标条带的分子量是否与理论值一致,排除非特异性条带。   检查阴性对照(如空白组、无靶蛋白的细胞 / 组织样品)是否出现条带,阳性对照是否有清晰目标条带,确保实验体系无交叉污染或抗体非特异性结合。 条带有无定性判断   根据实验组与对照组的条带存在与否,直接判断目标蛋白在样品中是否表达。   记录条带的清晰度、背景噪音强度,背景过高(如膜上整体发光 / 荧光)会影响定性结果准确性,需备注实验条件(如封闭时间、抗体浓度)对背景的影响。 二、定性化学发光法检测的半定量分析内容

  化学发光法通过底物被酶(HRP/AP)催化产生的光信号成像,信号强度与靶蛋白含量呈正相关,半定量依赖条带灰度值分析,核心内容如下:
灰度值采集与校准   使用凝胶成像系统或专业图像分析软件(如 ImageJ、Quantity One),采集目标条带和内参条带(如 GAPDH、β-actin)的灰度值。   对图像进行背景校正:选取条带周围无信号区域的平均灰度值,从目标条带灰度值中扣除,消除背景噪音干扰。
相对表达量计算   以内参蛋白灰度值作为参照,计算目标蛋白灰度值与内参灰度值的比值,该比值即为样品中目标蛋白的相对表达量,用于消除上样量误差。   若为多组实验,需计算各组相对表达量的均值和标准差(SD)或标准误(SEM),为后续统计分析提供数据。
组间差异分析   对比不同处理组(如药物干预组、疾病模型组、对照组)的相对表达量,判断目标蛋白表达的上调 / 下调趋势。   结合统计学方法(如 t 检验、方差分析)验证组间差异的显著性,标注 P 值(如 P<0.05、P<0.01)。
条带形态辅助分析   观察条带的宽窄、粗细、拖尾情况,拖尾严重可能提示蛋白降解或转膜不均,需备注该样品数据的可靠性。
三、定性荧光显色法检测的半定量分析内容

  荧光显色法通过荧光标记二抗与靶蛋白结合,在特定激发光下产生荧光信号,信号稳定性优于化学发光法,半定量分析内容除上述通用项外,还包括以下要点:
荧光信号强度校准   利用成像系统的荧光定量功能,采集目标条带和内参条带的荧光积分强度(而非灰度值),该值直接反映荧光标记物的含量,与靶蛋白浓度正相关。   进行荧光背景扣除:选择膜上无条带区域的平均荧光强度作为背景值,确保定量结果准确。 多靶标同步分析(荧光法优势)   若使用不同波长荧光标记的二抗检测多个靶蛋白(如同一膜上检测目标蛋白和内参,或两个不同靶蛋白),需分别采集对应波长的荧光信号,独立计算各靶蛋白的相对表达量,无需剥离膜或重新孵育抗体。   验证不同荧光通道之间是否存在信号串扰,确保多靶标定量结果无相互干扰。 信号线性范围验证   荧光信号存在线性响应范围,需确认目标条带的荧光强度处于线性区间内(避免信号过强导致饱和或过弱无法检测)。   若信号超出线性范围,需调整上样量或抗体浓度重新实验,保证半定量数据的有效性。 重复性分析   对比同一实验重复批次的条带荧光强度,计算变异系数(CV),评估实验方法的重复性,CV 值越低说明实验稳定性越好。



研究结果

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